Introducción
⌅La mortalidad embrionaria (ME) constituye un problema de importancia económica en la industria avícola (11.
Hortúa-López LC, Cerón-Muñoz MF, Zaragoza-Martínez MdL, Angulo-Arizala
J. Avicultura de traspatio: aportes y oportunidades para la familia
campesina. Agronomía Mesoamericana. 2021; 32(3): 5-6. http://dx.doi.org/10.15517/am.v32i3.42903
). A principios del siglo XX cuando los lotes de
producción eran pequeños, la tasa de ME no superaba el 10 %. Sin
embargo, hacia 1950 con la transición de métodos de manejo primitivos
hacia prácticas modernas de producción intensiva (reproducción en
confinamiento e incubación artificial a gran escala) los valores de ME
alcanzaron el 25 % o más (22. Romanoff AL. Critical periods and causes of death in avian embryonic development. The Auk. 1949; 66(3): 264-270. https://digitalcommons.usf.edu/auk/vol66/iss3/3
).
La ME en pollos no se distribuye
uniformemente durante los 21 días de incubación. Modelos matemáticos han
establecido que la curva de mortalidad presenta dos picos durante las
diferentes fases del desarrollo que ocurren en la primera y tercera
semana. Estos se relacionan con los cambios en el metabolismo de los
embriones, la edad de las reproductoras y el manejo de los huevos
fértiles. En este sentido, la ME se divide en temprana, intermedia y
tardía (33.
Jassim EW, Grossman M, Koops WJ, Luykx RAJ. Multiphasic analysis of
embryonic mortality in chickens. Poult. Sci. 1996; 75(4): 464-471. https://doi.org/10.3382/ps.0750464
).
Plano y Di Mateo (2001) señalan que la
embriodiagnosis es una herramienta imprescindible para médicos
veterinarios y gerentes de distintas áreas de producción avícola. Esta
técnica permite un análisis integral del proceso de incubación dirigido
al diagnóstico de posibles causas de falta de productividad en la planta
incubadora (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
Es la práctica de revisar los huevos de 21 días de incubación que
quedan sin eclosionar en las bandejas de las nacedoras con la finalidad
de determinar las causas de la falla en el nacimiento de los pollitos,
así como precisar la edad cronológica del desarrollo embrionario en la
que se produjo la falla que condujo al fracaso de la incubación para ese
embrión en específico. Contribuye a determinar si el huevo es infértil o
si existen otras causas que afectan su integridad y por lo tanto la
viabilidad del embrión (55.
Juárez-Estrada MA. Embriodiagnóstico. Evaluación casuística del fracaso
en el desarrollo embrionario durante el proceso de incubación. Parte I.
Los Avicultores y su entorno Nº 84, BM Editores. Departamento de
Producción Animal: Aves FMVZ-UNAM.
27-Fracaso_Desarrollo_Embrionario_1.pdf
).
Como
se trata de una población, hay individuos que normalmente no completan
su desarrollo embrionario muriendo en alguna etapa del proceso, por ese
motivo se definen estándares comparables con los valores hallados (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
Una
vez conocido el momento en que se produce la ME por encima de los
valores normales se pueden tomar las medidas correctivas (sanitarias o
nutricionales) tanto en las granjas de los reproductores, el transporte
de huevos fértiles a la planta de incubación o en la fábrica de
raciones. Posterior a los 21 días del proceso de la incubación se
producen alteraciones que hacen muy difícil determinar la edad exacta a
la murió el embrión, motivo por el cual se dan claves para ubicarlos por
períodos que corresponden a las posibles causas de muerte o falta de
productividad (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
El examen de los pollitos nacidos también permite tomar acciones
correctivas, así como pronosticar la productividad del futuro lote en la
granja de producción. De allí, la importancia del diagnóstico de las
patologías perinatales (66.
Sardá-Jova R, Vidal-Pavón A. Patología de la incubación. Instituto de
Investigaciones Avícolas, La Habana, Cuba. Patología de la incubación
).
Se
han destacado diversos estudios que abordan aspectos claves del proceso
de incubación en aves de corral, entre ellos la evaluación de los
factores que influyen en su éxito o fracaso. Entre ellos se destaca lo
relacionado con el manejo del huevo fértil antes del proceso (77.
Boleli IC, Morita VS, MatosJr JB, Thimotheo M, Almeida VR. Poultry Egg
Incubation: Integrating and Optimizing Production Efficiency. Brazilian
Journal of Poultry Science. Rev. Bras. Cienc. Avic. 2016; 18(spe 2):
001-016. https://doi.org/10.1590/1806-9061-2016-0292
), el análisis de la relación entre la ME y
variables como la edad de las reproductoras, la fertilidad y pérdida de
peso del huevo durante la incubación (88.
Tona K, Voemesse K, N'nanlé O, Oke OE, Kouame YAE, Bilalissi A, et
alChicken Incubation Conditions: Role in Embryo Development, Physiology
and Adaptation to the Post-Hatch Environment. Front. Physiol. 2022;13:
895854. https://doi.org/10.3389/fphys.2022.895854
), la identificación de puntos críticos en la incubación y el manejo posterior de los parrilleros (99.
Navarro MP. Puntos críticos de incubación y primera semana de vida en
parrilleros de conformación. En: Memorias del XVIII Congreso
Latinoamericano de Avicultura, Bolivia. 2003; 93-96.
),
el desarrollo de modelos matemáticos para describir la distribución
temporal de la ME temprana, así como el efecto de las máquinas
incubadoras sobre la distribución de fallas en el proceso (1010.
Wang YH, Lin J, Wang J, Wu SG, Qiu K, Zhang HJ, et al. The Role of
Incubation Conditions on the Regulation of Muscle Development and Meat
Quality in Poultry. Front. Physiol. 2022; 13:883134. https://doi.org/10.3389/fphys.2022.883134
). Rodríguez y Cruz (1111.
Rodríguez-Moya J, Cruz-Bermúdez AI. Factores que afectan la
incubabilidad de huevo fértil en aves de corral. Nutrición Animal
Tropical. 2017; 11(1): 16-37. http://dx.doi.org/10.15517/nat.v11i1.28295
) destacaron diversos factores que afectan la
incubabilidad de huevo fértil en aves de corral, aportando elementos
relevantes para optimizar este proceso en sistemas productivos.
En
Cuba, se han desarrollado diversas investigaciones en reproductores
ligeros, destacándose el impacto de la temperatura y el tiempo de
almacenamiento de los huevos fértiles en la eclosión de los pollitos de
primera calidad (1212.
Kettrukat T, Grochowska E, Therkildsen M. The effect of incubation
temperature on the development of the locomotory system and welfare in
broiler chickens: A review. Livestock Science. 2023; 276: 105326. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2023.105326
), el potencial incubatorio de huevos clasificado como defectuosos (por forma o peso) de reproductoras ligeras White Leghorn (1313.
Sardá R, Vidal A. Resultados de la incubación de huevos con diferentes
días de almacenamiento. Rev. Cubana de Ciencia Avícola. 2008; 32: 2.
),
así como el análisis de componentes de covarianza (efecto directo y
materno) en una línea pura ligera en rasgos de postura y la calidad de
huevos incubables en una nueva reproductora bilineal (L78) (1414.
Ruiz D, Sardiñas A, García AJ. Componentes de covarianza de efecto
directo y materno de una línea pura ligera en rasgos de postura. Rev.
Cubana de Ciencia Avícola. 2006; 30(1): 5-8.
).
En
reproductores pesados se destaca el estudio de los resultados de la
incubación de huevos con diferentes días de almacenamiento. Se
investigaron los parámetros de calidad de los huevos de líneas camperas (1515.
Godínez-Doval O, Villa-Castillo JR, Fumero-Durán JE. Parámetros de
calidad de los huevos de líneas camperas. Rev. Cubana de Ciencia
Avícola. 2013; 37(2): 37-42.
), el efecto del cierre nocturno del nidal sobre la calidad del huevo y su aprovechamiento en planta de incubación (1616.
Pérez EO, Quintana D, González LW, Sánchez A. Efecto del cierre
nocturno del nidal sobre la calidad del huevo y su aprovechamiento en
planta de incubación. Rev. Cubana de Ciencia Avícola. 2013; 37(1):
69-72.
) y la evaluación de la calidad de los huevos de
cáscara marrona de tres híbridos obtenidos a partir del cruzamiento de
líneas puras de la raza Rhode Island Red (1717.
Mesa M, Villa JR. Evaluación de la calidad de los huevos de cáscara
marrona de tres híbridos obtenidos a partir del cruzamiento de líneas
puras de la raza Rhode Island Red. Rev. Cubana de Ciencia Avícola. 2017;
41(2): 9-14.
).
No obstante, es necesario
profundizar en las causas multifactoriales que afectan a los huevos
embrionados en sus diferentes fases de desarrollo, así como conocer las
patologías embrionarias y neonatales que impactan en la viabilidad de
los pollitos. En este contexto, Rodríguez et al. (1818.
Rodríguez-Vaillant Y, Sardá R, Edghill E, Vidal A. El programa
IncubaData: Valoración de cinco implementaciones. Rev. Cubana de Ciencia
Avícola. 2016; 40(1): 71-76.
) realizaron un aporte
significativo diseñando el software IncubaData, especializado en evaluar
parámetros críticos durante el régimen de incubación y optimizar el
control biológico en plantas incubadoras.
El presente trabajo tuvo como objetivo actualizar el conocimiento publicado sobre las pruebas de diagnóstico (ovoscopía y embriodiagnosis) para evaluar el desarrollo embrionario en las plantas de incubación, clasificación por categorías, fórmulas de cálculo para análisis de datos y valores normales en cada etapa de la incubación. Este trabajo pudiera constituir un material de consulta especializada para estudiantes de pregrado y posgrado, así como para profesionales del sector avícola que laboran en plantas incubadoras.
Parte Especial
⌅La
baja eclosión de huevos impacta en la eficiencia productiva y
representa un problema económico clave en la industria avícola. Por cada
disminución porcentual en los pollitos vendibles nacidos a partir de
huevos incubados, el costo para producir un pollito de engorde vendible
aumenta aproximadamente 1,2 %. Este fenómeno está determinado por la
infertilidad y la ME, que ocurre antes y durante la incubación. La ME no
se distribuye de manera uniforme a lo largo del período de incubación
de 21 días. Por el contrario, se distribuye en dos fases: primera semana
(fase temprana) y la tercera semana de incubación (fase final) (1111.
Rodríguez-Moya J, Cruz-Bermúdez AI. Factores que afectan la
incubabilidad de huevo fértil en aves de corral. Nutrición Animal
Tropical. 2017; 11(1): 16-37. http://dx.doi.org/10.15517/nat.v11i1.28295
, 1919. Gairal NM. Fisiología de la puesta de la gallina. Veterinaria Digital. 2019. https://www.veterinariadigital.com/articulos/fisiologia-de-la-puesta-de-la-gallina/
, 2020.
Gualpa-García AM. Parámetros básicos de incubación para asegurar la
eclosión en los huevos de gallina. Repositorio Universidad Técnica de
Babahoyo. 2022. http://dspace.utb.edu.ec/handle/49000/13262.
).
La
recopilación de datos precisos sobre infertilidad, incubabilidad, el
tiempo y la naturaleza de las pérdidas de embriones por medio de
ovoscopías y embriodiagnosis, permite comparar el rendimiento de la
planta de incubación con las guías de manejo estándar de la línea
genética. Esto proporciona una base para investigar problemas de
incubabilidad, identificar factores que causan desviaciones en el patrón
normal de ME, detectar errores, identificar causas probables y proponer
soluciones. La aplicación de estas prácticas como parte de un programa
de calidad se refleja en la economía del sistema productivo avícola
mediante la obtención de un mayor número de pollitos nacidos (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
1. Pruebas de diagnóstico para el análisis de la evolución de los embriones en el proceso en la planta de incubación
⌅1.1 Ovoscopía
⌅Observación
a partir del día 5 de incubación que consiste en proyectar un rayo de
luz sobre el huevo generando un efecto de traslucidez. Permite
visualizar en cierta forma el interior del huevo. Al comparar con los
demás embriones se puede concluir si se encuentra retrasado en
desarrollo (ME) o se trata de un huevo claro, denominación más empleada,
indicando huevos infértiles y aquellos que presentan ME temprana (1818.
Rodríguez-Vaillant Y, Sardá R, Edghill E, Vidal A. El programa
IncubaData: Valoración de cinco implementaciones. Rev. Cubana de Ciencia
Avícola. 2016; 40(1): 71-76.
).
1.2 Embriodiagnosis
⌅Es
la práctica que se utiliza para estudiar los huevos que no eclosionaron
tras los 21 días de incubación. Consiste en realizar la necropsia de
los huevos en las bandejas de las nacedoras marcadas como muestras para
determinar si éstos eran fértiles o si se ha producido alguna
interrupción de su desarrollo durante el proceso de incubación (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
). Permite diagnosticar causas de baja productividad en las plantas de incubación (2121. Ross Tech. Investigación de las prácticas de incubación. Reproductora. 2010;1-39. http://es.aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/Spanish_TechDocs/RossTechInvestigacindelasprcticasdeincubacinmayo2010.pdf
). Además, contribuye a identificar si las
desviaciones que se presentan respecto a un patrón que entregan las
casas proveedoras de genética para cada línea se están presentando en el
proceso de incubación o provienen de la granja de reproductoras, sitios
de almacenamiento y conservación del huevo previo al cargue en máquinas
(44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
1.3. Procedimiento de embriodiagnosis (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
)
⌅
- Rotular las bandejas de la nacedora como muestras y el tamaño de la misma depende de la planta de incubación, se recomienda revisar cuatro bandejas, una de la parte superior, dos de la parte media y una de la inferior.
- Durante la transferencia de los huevos de la incubadora a la nacedora no se deben realizar ovoscopías a las muestras con el fin de no extraer los huevos claros.
- El día del nacimiento recolectar la totalidad de huevos no eclosionados y desechos de las bandejas de muestra. Colocar en una bandeja para su posterior análisis en un lugar apropiado con buena iluminación (alejado y aislado de las salas de incubación, nacedoras y otros pollitos).
- Romper la cáscara en el espacio de la cámara de aire y retirar las membranas testáceas.
- Identificar el estado de desarrollo embrionario y clasificar los huevos separándolos por grupos en infértiles, mortalidad (temprana, intermedia y tardía), contaminados, malformados y con mala posición.
- Registrar los datos obtenidos en la planilla de embriodiagnóstico.
- Analizar los datos y contrastarlos con la guía de la línea genética.
- Utilizar un recipiente de 20 litros para arrojar los residuos que ya se analizaron.
- Debe participar un técnico de conjunto con el especialista encargado de realizar la embriodiagnosis, cuya función será realizar las anotaciones correspondientes en una planilla.
Incluir en el apartado de observaciones, los tratamientos efectuados al lote, temperatura ambiente registrada, cualquier inconveniente durante el transporte de los huevos, el número total de pollitos nacidos del lote, la cantidad total de huevos no eclosionados que quedaron como remanentes en las bandejas y el porcentaje de nacimiento real del lote y el índice de nacimiento estándar del lote.
Como resultado de la disección
del total de los huevos no eclosionados, el técnico asistente debe
anotar en la planilla por categoría lo que se observa de cada parte,
según lo recomendado al inicio. Para calcular el índice por categoría,
se divide el total de huevos analizados por categoría entre el total de
huevos puestos a incubar en las bandejas, y el resultado se multiplica
por 100. La embriodiagnosis se puede hacer abriendo los huevos en su
parte media, con los dedos pulgares de ambas manos o abriéndolos por el
polo superior, donde se encuentra la cámara de aire. Este último
procedimiento es el más recomendado. Se retira con tijeras la periferia
de la misma (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
), esto permitirá observar el interior del huevo minuciosamente (Figura 1).
2. Clasificación por categorías
⌅A medida que el operador observa los huevos que va abriendo, hace el diagnóstico del momento en que se interrumpió el proceso de incubación o si se trata de un huevo infértil, contaminado o cascado. El ayudante irá anotando estos datos en una planilla, para luego hacer los cálculos y así conocer los desvíos de los valores normales.
Se definen las siguientes categorías en la falla de la eclosión (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
, 2222.
Souza da Silva C, Molenaar R, Giersberg MF, Rodenburg TB, van Riel JW,
De Baere K, et al. Day-old chicken quality and performance of broiler
chickens from 3 different hatching systems. Poult. Sci. 2021;
100(3):100953. https://doi.org/10.1016/j.psj.2020.12.050
):
2.1. Huevos infértiles
⌅No se fertilizaron y por tanto no tienen desarrollo embrionario. Se observa el blastodisco (formación blanquecina 3 y 4 mm de diámetro) (Figura 2A).
2.2. Huevos fértiles
⌅El óvulo fecundado en el momento de la postura es un embrión con alrededor de 50 000 células. Se forma el blastodermo con un área interna o pelúcida (embrión propiamente dicho) y un área externa u opaca (Figura 2B).
Este
diagnóstico diferencial entre huevo fértil e infértil es relativamente
fácil en huevos frescos. En el momento de efectuar la embriodiagnosis a
los 21 días de incubación se producen cambios y por este motivo, se
tienen en cuenta otras características (además de la observación del
blastodermo) que ayudan a su identificación, por ejemplo, la yema es
menos brillante y no se encuentra ubicada en posición central como en el
huevo fértil (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
). Es notable en este período la formación de las estructuras anexas del embrión tal como se observa en la Figura 3C. Además, se define la ME.
2.3. Fase I.
⌅ME temprana: comprende la primera fase de la incubación desde el 1er día hasta el 4to día (Figura 3A-E). Se aprecia la descripción del desarrollo embrionario, desde las primeras horas hasta el 4to día de incubación. A: Primeras horas de incubación. Se diferencian el área opaca (1) del área pelúcida (2) y la línea primitiva (3). B: 1er día de incubación. Aparece el mesodermo a cada lado del área pelúcida, en forma de cuernos, constituyéndose el falso proamnios. C: 2do día de incubación. En la porción proximal se observan los vasos sanguíneos intraembrionarios como un anillo vascular (1) que se originan en la aorta. Los vasos sanguíneos extraembrionarios (2) que unirán el embrión con el saco vitelino. D: 3er día de incubación. Comienza la formación del amnios que rodea al embrión. Se forman los arcos aórticos y la torsión del corazón sobre sí mismo y comienza la formación de alas, patas, nariz y alantoides. Se observan los vasos sanguíneos (1) y el órgano pulsátil (2). E: 4to día de incubación. Se inicia la formación del estomodeo (futura boca) y lengua del embrión. Se comienza a notar la formación del ojo (1).
Durante la embriodiagnosis se pueden observar formaciones que pueden confundir el diagnóstico de ME en este período:
- Coágulos de sangre o restos de tejidos ovulatorios en el vitelo (Figura 4A), que se diferencia de la formación temprana de un embrión. Se observa un desprendimiento de tejidos o sangre de la gallina en el momento de la ovulación, es frecuente encontrarlo.
- Vitelo moteado o revuelto (Figura 4B), asociado a cuadros tóxicos de la gallina (intoxicación por nicarbazina, afecta también el color de la cáscara del huevo y produce infertilidad).
- Manchas blancas en el vitelo (Figura 4C), relacionadas con estados sanitarios de la gallina. Se deben diferenciar de la formación temprana de las estructuras anexas del embrión (Figura 3C).
2.4. Fase II o ME media
⌅En la Figura 5 (A-Ñ) ,
comprende el período de los embriones muertos desde el 5to hasta el
17mo día de incubación. Lo más importante en esta fase comienza con la
formación del ojo (Figura 5A) y finaliza cuando el pollito se prepara para la eclosión (Figura 5Ñ).
La ME va acompañada de procesos naturales de degradación de la sangre
que produce un color que puede confundirse con huevos contaminados por
bacterias (2323.
Intriago MVA, Cedeño ROA, Hurtado EA, Rivera FRD. Manejo en edad de
reproductoras y temperatura de incubación sobre ventana de nacimiento y
calidad del pollito BB. Ciencia UNEMI. 2023; 16(43): 24-34. http://dx.doi.org/10.29076/issn.2528-7737vol16iss43.2023pp24-34p
, 2424.
McIlwaine K, Law CJ, Lemon K, Grant IR, Smyth VJ. A Review of the
Emerging White Chick Hatchery Disease. Viruses. 2021; 13(12): 2435. https://doi.org/10.3390/v13122435
). Estos últimos presentan un olor fétido característico (Figura 6).
En la Figura 5Ai: 5to día de incubación, se pueden observar a simple vista los ojos (1), comienza la diferenciación sexual, se forman la molleja, el proventrículo. Los cartílagos comienzan a osificarse (formación ósea). Aii: Es visible el saco amniótico (1), la alantoides se hace funcional y hay una gran curvatura en la zona cefálica. B: 6to día, inicio de la formación del pico, se detalla la estructura denominada diamante del pico (1) y comienzan los movimientos voluntarios del embrión. Ci: 7mo día, rotación del embrión. Se define muy bien la vascularización del vitelo (1). Los movimientos voluntarios del embrión son notables y se encuentra todavía sobre la superficie del saco vitelino. Cii: El amnios (1) se visualiza como una estructura serosa transparente que envuelve al embrión. El saco vitelino (2) es un área ópticamente más densa y vascularizada. La alantoides (3) es menos vascularizada y menos densa. El abdomen es más prominente por el desarrollo de las vísceras en su interior y el pico tiene forma de pico de loro. Di: 8vo día, el embrión se ubica lateralmente al vitelo (1), se notan los dedos y las patas. Dii: Se inicia la formación de los folículos de las plumas y el pico tiene forma de diamante (1). E: 9no día, las patas se orientan hacia la cámara de aire (1). F: 10mo día, el pico comienza a endurecerse (1), el embrión está separado del saco vitelino y flota libremente en el líquido amniótico. Se pueden observar los poros de la piel y se consume la albúmina. G: 11no día, el cuerpo del embrión crece rápidamente, el párpado (1) comienza a cubrir el ojo. Hi: 12mo día, se percibe el plumón (1) en alas, muslos y cuello. Hii: Los dedos están completamente formados, se produce la mineralización ósea y comienza el desarrollo de las escamas en la piel de las extremidades posteriores. Ii: 13er día, en este momento comienza la absorción de la proteína que contiene el líquido amniótico y aparecen la cresta, barbillas y escamas de las patas (1). Iii: En este momento el plumón (1) cubre a todo el embrión. Ji: 14to día, en este momento las proporciones corporales son las características de un pollo, el embrión efectúa una rotación y altera su posición con relación al eje longitudinal del huevo. La cabeza gira en dirección de la cámara de aire. El pico (1) aparece con la punta córnea hacia el polo superior del huevo. Jii. El plumaje es evidente (1), se observa muy bien el pico córneo (2). K: 15to día, la albúmina ha desaparecido en su totalidad. Si se encuentran vestigios de ésta, es por humedad alta, temperatura baja o ambas situaciones en la incubadora. El intestino comienza (1) a penetrar al interior de la cavidad abdominal. L: 16to día, Se observa muy bien la presencia de plumas en todo el embrión. El vitelo (1), tiene un rol importante en este momento, si la temperatura de la incubadora sube a valores muy altos, se desnaturalizan las proteínas afectando así su valor nutritivo. Las uñas y pico se endurecen más aún. En el saco alantoideo aparece un acúmulo de material oscuro producto de las excreciones del metabolismo del embrión. Ñ: 17mo día, el embrión ha absorbido todo el líquido amniótico y alantoideo. Se ubica en posición normal para nacer con el pico debajo del ala derecha.
2.5. Preparación para la eclosión picando la cámara de aire
⌅Etapa que se caracteriza por la absorción del saco vitelino y el pasaje a una respiración pulmonar (Figura 7). Se evidencia el desarrollo embrionario a partir del 18vo día hasta picar la cámara de aire. Ai: 18vo día, el embrión completó su crecimiento, el pico se orienta hacia la derecha. Comienza la absorción de la yema junto con la entrada del saco vitelino (1) en la cavidad abdominal. Aii: El embrión no ha picado la cámara de aire (1), algunos adelantados comienzan la ruptura del amnios. Bi: 19no día, el embrión ocupa todo el espacio del huevo excepto la cámara de aire. Comienza la respiración pulmonar. La absorción del vitelo se produce paulatinamente hasta que penetra totalmente en la cavidad abdominal (Figura 7Bi-Biii).
2.6. Picados no nacidos (PNN)
⌅Figura 8 (Ai - Bii) se aprecia el completamiento del desarrollo embrionario hasta el nacimiento del pollito. Ai: 20mo día, el embrión luego de romper la cámara de aire ocupa todo el espacio disponible y comienza a picar (1). Aii: El saco vitelino ya fue totalmente incorporado a la cavidad abdominal y comienza la cicatrización del ombligo. Bi: El embrión luego de permanecer 24 horas con respiración pulmonar comienza con los esfuerzos para eclosionar. Pica la cáscara del huevo (1) en forma rotativa y en sentido inverso a las agujas del reloj. Los pollitos nacen mojados y agotados por el esfuerzo realizado (2). Bii: Una manera de determinar que el nacimiento de los huevos viables se ha completado es calculando el porcentaje de pollitos con el plumón del cuello mojado. Como índice se calcula que con un 5 % finalizó el nacimiento retirándose los carros de las nacedoras.
En la Figura 9 se observan pollitos que picaron el cascarón pero no eclosionaron
totalmente por baja temperatura y/ o alta humedad durante el período de
incubación (2424.
McIlwaine K, Law CJ, Lemon K, Grant IR, Smyth VJ. A Review of the
Emerging White Chick Hatchery Disease. Viruses. 2021; 13(12): 2435. https://doi.org/10.3390/v13122435
, 2525.
Wijnen HJ, van der Pol CW, van Roovert-Reijrink IAM, De Smet J, Lammers
A, Kemp B, et al. Low incubation temperature during late incubation and
early feeding affect broiler resilience to necrotic enteritis in later
life. Front. Vet. Sci. 2021; 8:1-16. https://doi.org/10.3389/fvets.2021.784869
).
2.7. Pollitos con malformaciones
⌅En la Figura 10 (A-S) se observan imágenes que corresponden a etiologías variadas.
En la Figura 10 se destacan las malformaciones congénitas de los embriones durante el proceso de incubación (A-J). A: Se observan tres patas en un mismo miembro del embrión (triplopodia). B: Duplicación del maxilar superior (1). C: Malformación del miembro inferior puesto que no se ha desarrollado el hueso largo del tarso, siendo el resto del embrión de características normales. D: Encefalocele (hernia del cerebro) es la más frecuente, de etiologías muy diversas, comúnmente el exceso de temperatura durante la incubación. E: Embrión cíclope, ambos ojos se fusionan en uno en la línea media, hallazgo poco frecuente. F: Anoftalmía (ausencia total de ojos). G: Embrión dicéfalo, la duplicación es anterior o craneal. H: La duplicidad es posterior cuando las partes anteriores del cuerpo están normales, mientras que la parte posterior o caudal es doble. Ii: Embriones unidos o fusionados. El caso mostrado en esta foto se denomina cefalotoracópago (1). Iii: Cuando los embriones provienen de un mismo huevo o cigoto comparten el mismo vitelo, a diferencia de aquellos que se originan de un huevo de doble yema con distintos cigotos y que no poseen vitelo en común (2). J: malformaciones de las extremidades por traumatismos debido a las bandejas de las nacedoras, cinta transportadora, o cajas de pollitos con los pisos muy lisos y resbaladizos.
En la Figura 10 se observan también las patologías perinatales de la incubación (K-S). K: Los signos nerviosos al momento del nacimiento de etiologías variadas. L: Pollitos con la parte superior del pico sangrando por esfuerzos realizado durante la eclosión relacionado con la poca pérdida de humedad durante el período de incubación. M: Ombligo mal cicatrizado. N: Botones negros en el ombligo, mal cicatrizado, ya que partes del saco vitelino o tejidos extraembrionarios no se absorbieron completamente al momento de cerrarse el orificio umbilical. Ñ: Onfalitis. O: Granuloma por Aspergillus fumigatus. Nódulos en las serosas (1) en la masa encefálica (2) y en los pulmones (3), también pueden encontrarse tapones caseosos en los bronquios. P: Deshidratación y gota. El pollito que sufre deshidratación suele presentar un proceso de gota que puede ser articular (1) cuando los cristales de ácido úrico se depositan en las articulaciones o visceral, cuando afecta los órganos internos. Un signo característico de deshidratación de los pollitos es la observación de la vena metatarsiana (2). Q: Pollitos pegajosos, se puede deber a baja temperatura, alta humedad, ventilación inadecuada o a explosión de huevos en la nacedora. R: Pollitos con el plumón corto, seco y los ojos pegados; puede ser por temperatura alta, humedad baja, excesiva ventilación en la nacedora. S: Pollitos con infección bacteriana (Escherichia coli y Salmonella spp.). Los pollitos presentan generalmente pericarditis (1). El saco vitelino se lo encuentra indurado o coagulado (2), siendo una lesión más fácil de observar en pollitos que transcurren la primera semana de vida.
2.8. Huevos cascados
⌅Huevos
que al abrirlos, se les encuentra deshidratados o vacíos de contenido
por fisuras de la cáscara durante la manipulación con la consiguiente
pérdida excesiva de humedad (2323.
Intriago MVA, Cedeño ROA, Hurtado EA, Rivera FRD. Manejo en edad de
reproductoras y temperatura de incubación sobre ventana de nacimiento y
calidad del pollito BB. Ciencia UNEMI. 2023; 16(43): 24-34. http://dx.doi.org/10.29076/issn.2528-7737vol16iss43.2023pp24-34p
).
2.9. Huevos contaminados
⌅La
aparición de estos huevos y su incidencia varía en función del manejo
de las granjas de reproductores. La contaminación puede ser debida a
bacterias (E. coli, Salmonella spp., Pseudomonas sp., Staphylococcus spp., Clostridium sp.) o hongos (Aspergillus spp.) (2626.
Gast RK, Porter Jr RE. Salmonella infections. In: Swayne DE, Boulianne
M, Logue SM, et al, eds. Diseases of Poultry. 14th ed. Wiley;
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Boulianne M, Logue SM, eds. Diseases of Poultry. 14th ed. Wiley.
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Feuilloley MGJ, et al Structure, function and regulation of Pseudomonas aeruginosa porins. FEMS Microbiol. 2017; 41(5), 698-722. https://doi.org/10.1093/femsre/fux020
). La contaminación fúngica se caracteriza por el
color verde azulino del interior del huevo, en algunos casos se puede
observar una colonia (Figura 11A). La contaminación por bacterias produce un olor fétido característico y cambios de coloración (Figura 11B) .
Pollitos de descarte: Figuras 10 (D-Ñ), se trata en el acápite de patología perinatal.
Se
recomienda para situaciones de dificultades de diagnóstico hacer una
ovoscopía a los ocho días de incubación para abrir los huevos sin
desarrollo embrionario y de esa manera hacer un diagnóstico diferencial
entre ME muy temprana y huevo infértil (2323.
Intriago MVA, Cedeño ROA, Hurtado EA, Rivera FRD. Manejo en edad de
reproductoras y temperatura de incubación sobre ventana de nacimiento y
calidad del pollito BB. Ciencia UNEMI. 2023; 16(43): 24-34. http://dx.doi.org/10.29076/issn.2528-7737vol16iss43.2023pp24-34p
).
3. Fórmulas de cálculo para análisis de los datos
⌅Los
datos obtenidos en el proceso de incubación se pueden calcular por el
método simple o ponderado. En el caso del simple se puede calcular sobre
el universo de las cuatro bandejas de la nacedora y con el fin de
procesar la información del nacimiento del lote correspondiente de ese
día. Con este método se cometen muchos errores, por lo que es mejor
trabajar con el método de cálculo ponderado donde la información, se
obtiene de las cuatro bandejas sobre el universo del nacimiento de ese
lote analizado (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
). A continuación, se expone el ejemplo del cálculo de cada método:
3.1. Método simple
⌅Universo de cuatro bandejas
Un lote de reproductoras pesadas con un índice de eclosión del 85 %, un día determinado baja a 82,07 %. Se analizan los huevos remanentes que no eclosionaron de cuatro bandejas de las nacedoras, la capacidad total de huevos puestos en estas bandejas como universo, de 648 huevos puestos a incubar a razón de 162 huevos en cada una de ellas. Para realizar el cálculo del índice en cada uno de los indicadores, se eligen según la técnica, una bandeja de la parte superior de la nacedora, dos del medio, y una de la parte inferior y se realiza la embriodiagnosis, donde se obtienen los siguientes datos:
- Fase I: 63 embriones muertos, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 9,72%.
- Fase II: 7 embriones muertos, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 1,08%.
- Fase III: 20 embriones muertos, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 3,09%.
- PNN: 6 embriones, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 0,92%.
- Infértiles: 44 huevos, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 6,79%.
- Contaminados: 3 huevos, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 0,46 %
- Cascados: 9 huevos, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 1,39%.
- Malformaciones: 4 embriones, entre el universo de 648 huevos, igual a un índice de: 0,62%.
Posteriormente, se suman todos los valores (63+7+20+6+44+3+9+4), para un valor total de 156 huevos, que quedaron remanentes en las cuatro bandejas, se divide esta cifra, entre el universo de 648 huevos y se obtiene un índice de huevos no eclosionados de 24,07%.
Para el cálculo del % de nacimiento: Si del 100% de los huevos en bandejas, no eclosionó el 24,07%, (100%-24,07% = 75,93%), se considera el índice de nacimiento de estas bandejas, y no del lote, que resultó de un 82,07%.
Solo se obtiene una realidad de las cuatro bandejas, pero no la del lote.
3.2. Método ponderado
⌅Evaluación de la fórmula ponderada para el cálculo del índice de huevos no eclosionado e índice de nacimiento del lote (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
Se toman exactamente las mismas cuatro bandejas y los mismos valores
del método simple, pero se les pondera sobre el universo total del lote
del nacimiento analizado ese día.
Procedimiento para determinar el cálculo ponderado por etapa, se muestra un ejemplo de la fase I mediante la fórmula siguiente:
Fórmula 1 para el cálculo de la media ponderada - A x B / C = N
Fórmula 2 para el cálculo del índice ponderado por ítem o fase analizada - N / H x 100 = índice por ítem o fase analizada.
Donde:
Datos a tener presente
En el lote, se obtuvo un nacimiento de 55 444 pollitos de un total de huevos en el lote de 67 554, para un porciento de nacimiento del 82,07%. Lo que significa que quedaron en bandejas del lote huevos sin eclosionar 12 110.
Fórmula 1. A x B / C = N
Ejemplo (63 X 12110) / 67.554 = 11,29.
Fórmula 2. N / H x 100 = índice por ítem o fase analizada.
Donde:
Para este ejemplo, en total son 156 huevos que quedaron sin eclosionar en las cuatro bandejas elegidas.
Fórmula 2. N / H x 100 = índice por ítem o fase analizada.
Ejemplo (N=11,29 / H= 156) x 100 = 7,24%, que es el índice ponderado para la Fase I, para el nacimiento de 82,07%. Valor distinto, inferior al que se encontró en la misma fase, con la fórmula que toma el universo de las cuatro bandejas de 9,72% en el método simple.
A continuación, se relacionan los cálculos de todos los índices ponderados de los distintos ítem o fases:
- Fase I:
(63x12110)/67554= 11,29.
(11,29/156)x100= 7,24%.
- Fase II:
(7x12110)/67554=1,25.
(1,25/156)x100= 0,80%
- Fase III:
(20x12110)/67554)=3,58.
(3,58/156)x100=2,30%
- PNN:
(6x12110)/67554= 1,07.
(1,07/156)x100=0,69%
- Infértil:
44x12110)/67554=7,88.
(7.88/156)x100=5,05%
- Contaminado:
(3x12110)/67554=0,54.
(0,54/156)x100=0,35%
- Cascado:
(9 x 12 110)/67554=1,61.
(1,61x156)x100=1,03%
- Malformaciones:
(4x12110)/67554=0,72.
(0,72x156)x100=0.46%
Para calcular el índice de nacimiento se realiza la sumatoria total de todas las categorías de los índices de huevos no eclosionados, que resultó ser 17,92%, (100%-17,92%= 82,08% de nacimiento) en correspondencia con el que se proyecta de 82,08%. Valor más cercano al 82,08% del índice de nacimiento real del lote, que el 75,93% que se proyecta, cuando no se ponderan los valores y se utiliza como universo las cuatro bandejas analizadas. En la Tabla 1 se muestra la comparación de los distintos métodos de cálculo de los valores encontrados en la embriodiagnosis a partir del ejemplo anterior.
| Atributos | Cantidad | Método Simple (%) | Método Ponderado(%) |
|---|---|---|---|
| Fase I | 63 | 9,72 | 7,24 |
| Fase II | 7 | 1,08 | 0,80 |
| Fase III | 20 | 3,09 | 2,30 |
| PNN | 6 | 0,92 | 0,69 |
| Infértiles | 44 | 6,79 | 5,05 |
| Contaminados | 3 | 0,46 | 0,35 |
| Cascados | 9 | 1,39 | 1,03 |
| Malformaciones | 4 | 0,62 | 0,46 |
| Totales | 156 | 24,07 | 17,92 |
| Nacimiento proyectado | - | 75,93 | 82,08 |
| Nacimiento real del lote | 82,08 |
4. Valores normales
⌅Los
datos obtenidos durante la embriodiagnosis que se reflejaron en la
planilla, sirven para fines diagnósticos si se compara con valores
normales o estándares. Los estándares son distintos para cada empresa
debido a que pueden variar según la línea genética, la edad del lote, el
aprovechamiento de huevos incubables, el tiempo de permanencia de los
huevos en el almacén y al equipamiento de incubadoras (2121. Ross Tech. Investigación de las prácticas de incubación. Reproductora. 2010;1-39. http://es.aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/Spanish_TechDocs/RossTechInvestigacindelasprcticasdeincubacinmayo2010.pdf
). Es conveniente que cada empresa cuente con sus
propios estándares mediante la acumulación de datos de la rutina de la
embriodiagnosis. Las empresas proveedoras de la línea genética le pueden
proveer los valores normales para cada edad de los lotes en cuestión (44. Plano CM, Di Matteo AM. Atlas de patología de la incubación del pollo. Buenos Aires. 2001; 8-119.
).
Los valores estándares que sirven tanto para diagnóstico de situación
de una operación determinada o bien para fijar objetivos de mejoramiento
del personal involucrado se muestran en la Tabla 2.
| Categorías | Estándares (%) | |
|---|---|---|
| Infertilidad | 3,0 - 10,0 | |
| Mortalidad | Fase I | 2,0 - 4,0 |
| Fase II | 0,5 - 0,7 | |
| Fase III | 2,0 - 4,0 | |
| PNN | 0,7 - 0,9 | |
| Contaminados | 0,5 | |
| Cascados | 0,3 | |
| Malformaciones | 0,3 | |
| Pollitos de descarte | 0,3 | |
PNN: Picados no nacidos
Una vez que se conoce en qué período del proceso de incubación hay desvíos, se pueden buscar las posibles causas o desvío de los valores normales.
Conclusiones
⌅La embriodiagnosis permite identificar y cuantificar la distribución de las pérdidas de incubabilidad por categoría de desarrollo embrionario, así como establecer antecedentes y evaluar la tendencia del proceso de incubación comparado con los estándares del genotipo. Al establecer cómo se comporta la ME, se obtiene una herramienta fundamental para monitorear un parámetro crítico en la incubación y tomar decisiones correctivas ante señales de anomalía o factores desfavorables que comprometan el desarrollo.
Las condiciones de incubación particulares de cada empresa avícola pueden modificar el patrón de la curva de mortalidad, incluso cuando se mantiene la tendencia asociada a los mecanismos biológicos propios del embrión de pollo. Por ello, la implementación de pruebas diagnósticas es fundamental para identificar oportunamente las causas de mortalidad embrionaria y determinar si se trata de un problema operativo o está vinculado al lote de reproductoras.